медицинский каталог




Практикум по микробиологии

Автор Е.3.Теппер, В.К.Шильникова, Г.И.Переверзева

(рН 7,6) в добавляют 4 мл 1%-ного водного раствора генциана фиолетового из расчета \ г сухой краски на 25 л среды. Жидкость разливают в пробирки с поплавками* и стерилизуют при 1 атм в течение IS мин.

Среда 10. Среда Булира. К 1 л мясо-пептонкого бульона добавляют 12,5 г мандата и 6 мл 1%-ного раствора нейтральрота. Среду разливают в пробирки с поплавками я стерилизуют при 0,5 атм в течение 30 мин. Среда имеет вишневый цвет, при развитии кишечной палочки становится оранжевой и в поплавке скапливается газ.

Доминирующие на плотных средах колонки микроскопируют.

Для обнаружения маслянокислых бактерий из пробирок с картофе-готовят препарат в раздавленной капле с добавлением раствора

лем готов Люголя.

кксиотности

Определение общей кислотности в силосе. Берут навеску силоса 20 г и помещают в коническую колбу с обратным холодильником емкостью 500 мл. Содержимое колбы заливают 200 мл дистиллированной воды, тщательно перемешивают и нагревают в течение 1 ч. После охлаждения содержимое колбы фильтруют через бумажный фильтр и 10 мл фильтрата (с двойным количеством дистиллированной воды) оттнтровывают 0,1 и. раствором едкого натра в присутствии фенолфталеина до появления устойчивой слабо-розовой окраски.

Общее содержание кислоты в силосе в переводе на молочную выражают в процентах. I мл 0,1 и. раствора NaOH соответствует 0,009 г молочной кислоты. Умножив количество 0,1 н. NaOH, израсходованного на титрование экстракта из 100-г силоса, на 0,009, находят количество кислоты в силосе (%).

Пример рас чета. На титрование 10 мл вытяжки израсходовано 1,7 мл 0,1 н. NaOH, следовательно, иа 200 мл пойдет 34 мл 0,1 и. NaOH.

200 мл вытяжки получены нз 20 г силоса, а для нейтрализации 100 г силоса будет израсходовано А' мл 0,1 и. NaOH;

20

100.34

• = 170 мл 0,1 и. NaOH,

199

Умножив 170 на 0,009, получим содержание модемной кислоты в процентах:

170X0,009=1,83%

Достаточно точные результаты получаются и в том случае, если определение кислотности ведут следующем образом. Берут навеску силоса 5 г, растирают в ступке и помещают в широкую пробирку (диаметром 2— 2,5 см). Содержимое заливают 50 мл дистиллированной воды, закрывают резиновой пробкой и тщательно перемешивают. Навеску силоса настаивают при 10—12°С В' течение 30 мин, а затем определяют кислотность вытяжки титрованием. 10 мл вытяжки (с двойным количеством дистиллированной воды) оттитровывают ОД н. раствором едкого натра в присутствии фенолфталеина до появления устойчивой слабо-розовой окраски.

Пример расчета. На титрование 10 мл вытяжки израсходовано 1,7 мл 0,1 н. NaOH, следовательно, на 50 ил вытяжки — 8,5 мл; 50 мл вытяжки подучены из 5 г силоса, а для нейтрализации 100 г силоса будет израсходовано Ж мл 0,1 н. NaOH:

100.8,5

Х= _L _ 170 мл 0,1 н. NaOH ;

170X0,009=1,53% молочной кислоты.

Определение рН в силосе. Приготовление пктяжки силоса для определения в нем рН проводят так же, как для определения общей кислотности в енлпгс. рН находят с помощью индикаторов или электрометрического

определения. При использовании индикаторов поступают следующим образом, В фарфоровую чашку берут 2 мл вытяжки силоса и добавляют 2 капли индикатора (смесь равных объемов бромтимолблау и метилрета). Сравнивая цвет содержимого чашки с даш:ыми, приведенными ниже, определяют концентрацию водородных ионов.

Материалы и оборудование. Весы и разновесы, конические колбы емкостью 500 мл с обратный холодильником, широкие пробирки, треножник с асбестовыми сетками, колбы емкостью 100 мл и 250 мл,

воронки, бумажные фильтры, пипетки иа 10 мл и 2 мл, фарфоровые чашки, пинцеты; индикаторы: смесь равных объемов бромтимолблау и метилрета, фенолфталеин, метилеиовый синий, раствор Люголя (1 :2).

Питательные среда, стерильные чашки Петри, стерильные пипетки на 1 мл, стерильная водопроводная вода в пробирках по 9 мл и в колбах —по 50 мл. Чашки и пробирки с посевами. Микроскоп и вес необходимое для микроскопироваиия.

3. ДРОЖЖЕВАНИЕ КОРМА

Дрожжи содержат много легкопереваримого белка,

богаты эргостерином, легко переходящим в витамин D, витаминами А, В, Е; энергично размножаются, неприхотливы к среде обитания, их можно легко выращивать на отходах сельского хозяйства и -промышленности. Кормовые дрожжи в настоящее время готовят в больших количествах, размножая их на производственных отходах, в том числе растительных гидролизатах (солома, древесные отходы и т. д.). Сейчас найдены дрожжи (Candida), хорошо размножающиеся на углеводородах. Это дает возможность готовить дешевые кормовые дрожжи на отходах нефтяной промышленности. Помимо добавления в кормовой рацион сухих дрожжей, применяют дрожжевание корма. Для этого в измельченную и увлажненную растительную массу вносят культуру дрожжей. Периодически перемешивают. Дрожжи обильно размножаются в корме, что обычно совпадает, с его подкислением. Однако накопление кислот объясняется развитием молочнокислых бактерий, всегда обитающих на растительной массе. Для активного размножения дрожжей в кормах необходим ряд условий: хорошо по

страница 68
< К СПИСКУ КНИГ > 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 71 72 73 74

Скачать книгу "Практикум по микробиологии" (2.95Mb)


[каталог]  [статьи]  [доска объявлений]  [обратная связь]


Химический каталог Rambler's Top100

Copyright © 2009
(18.08.2019)